血培养标本采集注意事项
血培养是临床诊断败血症的重要方法,阳性结果对明确诊断、对症治疗有极高的应用价值。但据文献报道目前国内的血培养阳性率仅为17.8%~18.4%。为了提高血培养的阳性率,客观的反映出败血症患者血内存在病原菌的实际状况,需要临床医生精确选用血培养,检验师精心分离鉴定,更需要护理人员正确、无菌的操作技术!下面是yjbys小编为大家带来的血培养标本采集注意事项,欢迎阅读。
一、采血时机
1、尽可能在抗菌药物使用前;
2、对已经使用抗菌药物的病人,最好在下次用药前采集;
3、寒战和发热初起时采血可提高阳性率;
4、怀疑血流感染时应尽早采血,不要强调体温超过39才抽血。
二、采集方法
1、手卫生:洗手或手消毒,最容易忽略,却也是很重要的一条;
2、准备血培养瓶:根据检验申请单,选择合适的`血培养瓶,检查血培养瓶有无破损、保质期,用75%酒精消毒血培养瓶塞,作用60s,待干。在血液注入血培养瓶之前,用无菌纱布或棉签清除橡皮塞残留的酒精;
3、皮肤消毒:按常规消毒穿刺部位皮肤,使用消毒剂[碘酊或聚维酮碘(碘伏)]对皮肤进行严格仔细的消毒处理,消毒范围为8×10cm,待干,防止皮肤寄生菌或环境引起的污染。
4、持采血针按常规方法刺入静脉,另一头刺入相应血培养瓶内,利用瓶内真空抽取血标本,如用注射器无菌穿刺取血后,勿换针头直接注入血培养瓶。(使用采血针采血时应先采集需氧瓶后采集厌氧瓶,使用注射器采集标本时则反之)
5、建议每套血培养同时接种至需氧瓶和厌氧瓶,有利于微需氧菌和厌氧菌的检出。如果不能满足推荐的采血量时,应首先满足需氧瓶;婴幼儿血培养一般只抽一瓶需氧瓶进行培养,无需常规做厌氧瓶。
6、血液注入血培养瓶后轻摇瓶子以防血液凝固。
三、标本运送
1、已采集的标本应视为潜在性生物危险品,均应置于防漏、防渗、相对密封的容器中收集、存储与转运。
2、血培养采样结束后应由专人立即送至微生物实验室核收,一般不得超过2小时;如因某种原因不能及时送检,应将已采集好的血液培养瓶放在室温,切勿放入冰箱内冷藏或冷冻。
四、注意事项
1、标本采集和运送均应在防止污染的原则下认真进行。
2、不应从留置静脉或动脉导管处抽血,因为导管易被固有菌群污染。
3、为获得准确结果,需要多套血培养。成人应至少“双抽四瓶”,即至少在2个穿刺点抽取2套血培养,每套分别放入需氧和厌氧瓶中,每瓶8~10ml,并标明“左侧”或“右侧”采血点,可有效增加血培养阳性率。
.4、当怀疑骨髓炎、脑膜炎、肺炎和肾盂肾炎合并菌血症时,在抗菌药物使用前从不同部位抽取2套血培养,两个来源的采血时间必须接近(建议≤5分钟),各自做好标记。
5、对不明原因的发热、亚急性心内膜炎,由三个不同的部位抽取3套血培养,每套间隔时间≥1小时,当培养24~48h后若为阴性,则继续采集2套血培养。
6、导管相关血流感染(CR-BSI):
(1)希望保留深静脉导管者
至少2套血培养,其中至少一套来自外周静脉,另一套从导管采集,两个来源的采血时间必须接近(建议≤5分钟),并各自做好标记。
(2)决定拔除深静脉导管者
从独立的2个外周静脉部位,无菌采集2套血培养,同时无菌下取出导管并剪下5cm导管末梢送实验室(实验室采用Maki 半定量平板滚动培养)。
拓展阅读:
血培养标本采集方法
1. 采血指征:
可疑感染患者出现以下任一指征时,可考虑采集血培养:
1)体温>38℃或<36℃.
2)寒战.
3)外周血白细胞计数增多(计数>10.0×109/L,特别有“核左移”时)或减少(计数<4.0×109/L).
4)呼吸频率>20次/min或动脉血二氧化碳分压(PaCO2)<32mmHg.
5)心率>90次/min.
6)皮肤黏膜出血.
7)昏迷.
8)多器官功能障碍.
9)血压降低.
10)炎症反应参数如C反应蛋白、降钙素原(PCT)、1,3-3-D葡聚糖(G试验)升高等。
2.采血时间:
寒战或发热初起时采集,抗菌药物应用之前采集最佳。
3、采集套数:
一套血培养是从同一穿刺点采集的血液标本,通常分别注入需氧和厌氧瓶。成人每次应采集2套-3套,每套从不同穿刺点进行采集,2d-5d内无需重复采集。如怀疑感染性心内膜炎,应重复采集多套。儿童通常仅采集需氧瓶。有以下高危因素时应考虑厌氧瓶培养:其母产褥期患腹膜炎,或慢性口腔炎或鼻窦炎、蜂窝组织炎、有腹腔感染的症状和体症、咬伤、接受类固醇治疗的粒细胞缺乏患儿。考虑肺炎链球菌菌血症时,宜同时做脑脊液培养。
全自动血培养瓶
4.采血量:
成人每瓶采血量8mL-10mL,或按照说明书采集;婴幼儿及儿童采血量不应超过患者总血量的1%,具体采血量参考说明书。若采血量充足,注射器采集的血液先注入厌氧瓶,后注入需氧瓶,碟形针采集的血液反之。若采血量不足,优先注入需氧瓶。儿童患者因为血液中病原菌浓度较高,血培养量无需等同于成人。实验室会依照血培养瓶厂家的建议,采集足够的血液标本进行化验,护理人员要保证血液的量。
5.采集方法:
1)采集静脉血:仅在评估导管相关性血流感染时采集导管血。血培养宜单独采血,与其他检测项目同时采血,应先接种血培养瓶,以避免污染;
2)采集前做好手卫生:静脉穿刺点选定后,去除血培养瓶的塑料瓶帽,切勿打开金属封口环和胶塞,使用75%乙醇或70%异丙醇消毒,自然干燥60s。注意采血前检查血培养瓶是否完好无损、是否过期;
3)在穿刺前或穿刺期间:为防止静脉滑动,应戴无菌乳胶手套固定静脉;采集部位:推荐从外周静脉采集血液标本 ,应选择比较大的静脉如肘正中静脉或股静脉,不建议采集动脉血,因其诊断价值不大 ,同时因静脉留置导管采血常伴有高污染率 ,应避免从静脉留置导管采血。若医嘱需从导管处采血 ,应从外周静脉另外再采取一套血培养 ,加以帮助阳性结果判断。
4)穿刺点皮肤消毒:
a) 三步法:
① 75%乙醇擦拭静脉穿刺部位,待干30s以上。
② 1%-2%碘酊作用30s或1%碘伏作用60s,从穿刺点向外消毒,消毒区域直径达3cm以上。
③ 75%乙醇擦拭碘酊或碘伏消毒过的区域进行脱碘,对碘过敏的患者,在第一步基础上再用用75%乙醇消毒60s,待酒精挥发干燥后采血。
b)一步法:
0.5%葡萄糖酸洗必泰作用30s(不适用于2个月以内的新生儿),或70%异丙醇消毒后自然干燥(适用于2个月以内的新生儿)。
注:其他消毒剂需要进行消毒能力和适用性验证后オ可使用。
5) 用注射器无菌穿刺取血后,勿换针头(如行第二次穿刺,换针头),沿壁注入血培养瓶,不应将抗凝血注入血培养瓶。
6)血液接种到培养瓶后,轻轻颠倒混匀以防血液凝固。
7)完成工作后洗手。
6.血培养运送:
血培养瓶应在2h之内送至实验室孵育或上机;如不能及时送检,应将血培养瓶置于室温下,切勿冷藏或冷冻。
临床护理人员需要正确掌握血培养标本采集的方法,才能保证标本检测的准确性,提高阳性率,指导临床合理用药,提高治疗效果。